Размер шрифта
Цвета сайта
Изображения

Обычная версия сайта

Лейкоциты в мокроте норма у мужчин


показания к анализу, норма, причины патологии и методы терапии

В статье рассмотрим, по каким причинам обнаруживаются лейкоциты в мокроте. Мокрота представляет собой выделения из дыхательных путей, имеющих патологический характер и появляющихся в результате кашля. Отхаркивание является свидетельством нарушения функциональности внутренних выстилок респираторного тракта. Лабораторное исследование мокроты широко используется в диагностических целях при патологиях бронхов и легких.

Результаты процедуры позволяют дифференцировать заболевания, которые протекают в сопровождении кашля и других типичных клинических симптомов. Собрать мокроту для последующего лабораторного исследования можно своими силами или при помощи бронхоскопии – специальной медицинской манипуляции. О чем говорят лейкоциты в мокроте, интересно многим.

Необходимость исследования мокроты

Основной целью проведения указанного исследования является уточнение предполагаемого диагноза. У здоровых людей мокрота не продуцируется.

Прогрессирование патологических процессов в легких или бронхах приводит к изменениям активности деятельности соответствующих структур, сопровождается развитием болезненности в груди, одышки, кашля. Кроме того, увеличивается количество продуцируемой слизи, возможно присоединение бактериальной микрофлоры. В результате у пациента развивается кашель с выделением мокроты. Что означают лейкоциты в данном секрете, важно выяснить заранее.

Учитывая предполагаемый диагноз и результаты визуального анализа, специалист определяет соответствующее исследование. Использование разнообразных вариантов анализа мокроты позволяет произвести оценку физико-химических свойств жидкости, изменения цитологического характера (наличие раковых клеток), бактериальной инвазии. Очень часто обнаруживаются лейкоциты в мокроте в большом количестве.

Разновидности исследований

Исследование бронхиального секрета может осуществляться не только с использованием специализированного оборудования, но и невооруженным взглядом.

С учетом патологии, которую подозревает специалист, могут применяться следующие диагностические исследования:

  1. Общее лабораторное исследование мокроты. Врач производит оценку физических характеристик слизи, выделяемой в результате кашля.
  2. Микроскопическое (цитологическое) исследование. Чтобы провести соответствующую диагностику, лаборант использует микроскоп. Путем увеличения изображения осуществляется исследование жидкости. Данная методика позволяет определить наличие или отсутствие патологических клеток, способных появляться в слизи при определенных патологиях.
  3. Химическое. В данном случае производится оценка изменений, происходящих в метаболизме реснитчатого эпителия и альвеолоцитов бронхов.
  4. Бакпосев мокроты (бактериологическое исследование). Данное исследование основано на высевании бактерий, которые получены из мокроты, на питательную среду. Если колония начинает расти, то это говорит о наличии возбудителя в дыхательной системе. Важное преимущество посева – возможность определения чувствительности бактерий к определенным противомикробным медикаментам в условиях лаборатории.

При тяжелых формах патологий респираторного тракта с целью своевременной диагностики пациенту могут быть назначены все варианты исследований. Учитывая полученные результаты, специалист осуществляет подбор необходимой терапии. В норме лейкоциты в мокроте отсутствуют.

Общее лабораторное исследование

Стоит отметить, что макроскопическое или общее исследование мокроты позволяет произвести оценку слизистого секрета сразу после его получения. Данный вариант анализа применяется специалистами множество лет. Еще до изобретения современных анализаторов и микроскопов доктора определяли диагноз на основании внешнего вида отхаркиваемой слизи.

При диагностическом исследовании специалист обращает свое внимание на определенные аспекты.

Количество

В сутки может выделяться 50-1500 мл мокроты – все зависит от базового заболевания, которое нарушает нормальную секрецию бокаловидных клеток. Патологии респираторного характера вроде пневмонии и бронхита вызывают выделение около 200 мл мокроты в сутки. Лейкоциты в анализе присутствуют не всегда.

Резкий рост данного показателя наблюдается, когда в респираторном тракте скапливается кровь или гной, которые затем естественным путем покидают пути дыхания. Так, при бронхоэктатической болезни, дренированном абсцессе, гангрене легкого может выделяться до полутора литров мокроты.

Что еще показывает исследование мокроты? О лейкоцитах и других клетках в секрете расскажем ниже.

Характер

По характеру отхаркиваемой при кашле жидкости пульмонологи классифицируют мокроту на следующие виды:

  1. Кровянистая. Когда в жидкость, отхаркиваемую в процессе кашля, попадают порции крови или отдельные эритроциты, она приобретает характерный окрас. Подобная симптоматика указывает на повреждение сосудов. Вероятные причины – актиномикоз, инфаркт легкого, травма, рак.
  2. Слизистая. Является благоприятным признаком. Патологии, при которых выделяется слизистая мокрота – трахеит, хронические формы бронхита, бронхиальная астма.
  3. Слизисто-гнойная. Свидетельствует о дополнительном присоединении бактериальной инфекции. Помимо кашля и мокроты происходит выделение жидкости, представляющей собой продукты жизнедеятельности патогенных организмов и бактерии, уничтоженные иммунными клетками. Вероятные патологии – гангрена, бактериальные формы пневмонии, абсцесс легкого.
  4. Гнойная. Возникает по тем же причинам, что и слизисто-гнойная. Основным отличием является то, что в ней содержится большее количество продуктов тканевого распада и гноя.

Оценка характера секрета позволяет понять патологический процесс, развивающийся в системе дыхания, подобрать адекватную терапию, особенно, если в мокроте повышены лейкоциты.

Цвет

Цвет ее меняется в зависимости от ее характера. Вероятны следующие комбинации:

  1. Слизистая. Может быть прозрачной или иметь сероватый цвет.
  2. Слизисто-гнойная. Имеет серый или желтый цвет, может содержать гнойные вкрапления.
  3. Гнойная. Мокрота имеет коричневый, зеленый, темно-желтый окрас.
  4. Кровянистая. Включает разнообразные оттенки красного. Следует помнить, что красноватый цвет указывает на присутствие в мокроте видоизмененных эритроцитов. Если повреждается сосуд, то мокрота становится розовой или алой.

Запах

Примерно в 75% случаев мокрота характерного запаха не имеет. Единственным исключением является гнойная жидкость. Такой аромат обусловлен присутствием в слизи отмерших частичек тканей. В отдельных случаях может отмечаться фруктовый запах – когда прорывается киста в легком, в которой развивался гельминт (эхинококк).

Слоистость

Слизистый секрет, выделяемый в процессе кашля, имеет преимущественно гомогенную структуру. Мокрота, разделяющаяся на слои, свидетельствует о развитии следующих заболеваний:

  1. Абсцесс легкого. В данном случае мокрота разделяется на два слоя – гнилостный и серозный.
  2. Гангрена легкого. В этом случае к первым двум слоям добавляется третий – пенистый. Его появление обусловлено жизнедеятельностью определенных микроорганизмов, выделяющих газовые пузырьки.

Визуальный анализ мокроты позволяет быстро определить диагноз, не проводя дополнительных исследований.

Примеси

В слизистом секрете могут содержаться следующие примеси: серозная жидкость, гной, эритроциты. Наличие указанных включений позволяет специалисту определить степень поражения легочных тканей, понять, какая патология является первичной в каждом конкретном клиническом случае.

Химические исследования мокроты

Химическое исследование бронхиального секрета позволяет определить, насколько выражен патологический процесс. С учетом полученных результатов врач подбирает соответствующие методы лечения, позволяющие стабилизировать функциональность реснитчатого эпителия.

Реакция

Нормальным уровнем кислотности мокроты считается pH 7-11. При прогрессировании процесса распада тканей легкого возникает окисление секрета. В этом случае показатель кислотности составляет 6. Причины изменения значений кислотности базируются на нарушенном обмене минералов и солей.

Белок

В выделяемой мокроте практически всегда присутствует белок. В норме его показатель составляет 0,3%. Небольшое повышение данного показателя (до 1-2%) может свидетельствовать о прогрессировании туберкулеза. Существенное повышение – до 10-20% - является признаком формирования крупозной пневмонии. Лабораторный анализ мокроты с определением концентрации белка позволяет отличить указанные болезни на фоне исследования клинической картины (боль в груди, одышка, кашель) и результатов иных диагностических исследований. Какова норма лейкоцитов в анализе мокроты, пациенты спрашивают часто. Об этом далее.

Желчные пигменты

Желчные пигменты (микрочастицы холестерина) могут выделяться в мокроту, если имеются следующие патологии:

  1. Злокачественные новообразования респираторного тракта.
  2. Энтерококковая киста.
  3. Абсцесс.

Микроскопическое исследование

Микроскопическое исследование бронхиального секрета позволяет определить присутствие микроорганизмов или клеток (которые в норме должны отсутствовать) при помощи оптического аппарата.

Эпителиальные клетки

Присутствие эпителиальных клеток в мокроте является вариантом нормы. В ходе микроскопического исследования специалист обращает внимание на резкий рост количества клеток, возникновение эпителиальных цилиндров. Данная картина указывает на повреждение дыхательного пути и его внутренних оболочек.

Альвеолярные макрофаги

Основная функция этих клеток заключается в обеспечении локального иммунитета. Мокрота может содержать незначительное количество альвеолярных макрофагов. При резком возрастании их концентрации можно судить о наличии хронических форм воспалительных процессов (трахеит, астма, бронхоэктатическая болезнь, бронхит).

Лейкоциты в мокроте

Этот показатель является очень информативным. В норме лейкоциты в мокроте должны отсутствовать. Причем данное правило равнозначно для мужчин и женщин. Наличие лейкоцитов в мокроте говорит о присутствии острого воспалительного процесса, который может развиваться на фоне бактериального заражения. Это значит, что в организме могут присутствовать следующие патологии: бронхоэктатическая болезнь, пневмония, абсцесс. Методы лечения врач подбирает в зависимости о того, какая именно болезнь спровоцировала повышенные лейкоциты в мокроте.

Рассмотрим этот вопрос подробнее.

На практике в норме лейкоцитов в мокроте у женщин и мужчин содержатся от 2 до 5 единиц. Главным образом это нейтрофилы, но могут быть и другие разновидности белых кровяных телец. Что значит, если отклонились от нормы лейкоциты в мокроте у женщин и мужчин? Это зависит от того, какие их виды там определяются.

Вышеупомянутые нейтрофилы присутствуют в анализе в том случае, если у человека какая-то бактериальная инфекция органов дыхания: бронхит, пневмония и т.д. Также в слизи могут быть найдены эозинофилы. Они являются признаком аллергических заболеваний: аллергии на пыльцу, бронхиальной астмы, даже заражения гельминтами. Иногда в мокроте находят лимфоциты, и это свидетельствует о возможном заболевании человека коклюшем, туберкулезом.

К примеру, обнаружено 30 лейкоцитов в мокроте. Это может свидетельствовать об остром бронхите. При этом, секрет светлого цвета и кроме лейкоцитов, макрофагов, кокковой флоры в большом количестве, в нем может наблюдаться незначительная примесь эритроцитов.

20 лейкоцитов в мокроте могут появиться при бронхоэктатической болезни либо также при бронхите в острой форме. Диагноз ставится на основании других показателей.

Эритроциты

Эритроциты в мокроте обнаруживаются, если происходят разрывы больших или мелких сосудов. Характер кровотечения специалист определяет по концентрации этих тел. Стоит отдельно отметить появление в бронхиальном секрете видоизмененных эритроцитов, проникающих через расширенные сосудистые стенки в отсутствии разрыва последних. Типичным примером патологии является крупозная пневмония.

Эластические волокна

Присутствие таких волокон в слизистом секрете указывает на серьезное поражение легких, сопровождающееся распадом тканей. Основными примерами подобных патологий служат: туберкулез, поздние стадии бронхоэктатической болезни, гангрена, рак, сопровождающийся деструктивными поражениями паренхимы органа.

Опухолевые клетки

Появление атипичных клеток в бронхиальном секрете указывает на развивающийся онкологический процесс. Чтобы уточнить локализацию и тип патологии, необходимо провести дополнительные исследования.

Стоит отметить, что при помощи микроскопического исследования можно установить также дифференциацию клеток. Чем меньше измененные клетки похожи на исходные, тем хуже прогноз патологии.

Выявление туберкулезных микобактерий

Что значат лейкоциты в мокроте теперь известно. Микробиологическое исследование секрета – одна из наиболее важных методик верификации туберкулеза. Возбудителем патологии является палочка Коха.

Наличие микроорганизма определяется при помощи микроскопа. С целью визуализации возбудителя следует произвести окрашивание биоматериала по методу Циля-Нильсена. Когда в мокроте обнаруживается палочка Коха, специалист в результатах анализа указывает БК (+). Это говорит о том, что в жидкости был выявлен возбудитель. Подобных пациентов следует изолировать. Если результат – БК (-), то это значит, что пациент бактерию не распространяет.

Бакпосев при инфекционных патологиях легких

Бактериологическое исследование мокроты при воспалительных поражениях респираторного тракта в основном применяется с целью верификации внебольничных инфекций (актиномикоз, пневмония и прочие).

Проводят бактериологическое исследование в три этапа:

  1. Забор бронхиальной слизи для анализа.
  2. Посев мокроты на питательную среду, которая прошла предварительную подготовку.
  3. Пересев требуемой колонии, изучение физических, химических характеристик патогена.

Если есть необходимость, устанавливается восприимчивость микроорганизмов к противомикробным медикаментам путем дополнительной пробы на чувствительность. Для этого в чашку Петри помещают кружки бумаги, которые обработаны антибиотическими средствами. Те лекарства, вокруг которых произошло максимальное разрушение колонии, рекомендованы для использования при терапии конкретного пациента.

Показания к назначению общего лабораторного исследования

Врач может рекомендовать общее лабораторное исследование бронхиального секрета практически при любой патологии, которая сопровождается кашлем и отхаркиванием мокроты. Но указанное диагностическое исследование редко используется при вирусных сезонных инфекциях. В подобных случаях регресс кашля и других симптомов отмечается при соблюдении пациентом постельного режима и обильном питье.

Исследование мокроты требуется при подозрении на развитие следующих патологий:

  1. Пневмокониозы – профессиональные патологии бронхолегочной системы.
  2. Хронические формы бронхита.
  3. Бронхиальная астма.
  4. Гангрена легкого.
  5. Злокачественные новообразования.
  6. Абсцесс легкого.
  7. Туберкулез.

Подтверждение предполагаемого диагноза осуществляется при помощи инструментальных, физикальных, лабораторных методов.

Подготовка к исследованию

Процесс подготовки пациента к сбору бронхиального секрета для исследования является очень ответственным, от него может зависеть качество исследования. Если игнорировать простые рекомендации, в слизи могут появиться дополнительные примеси, которые помешают лаборанту определить первопричины развития кашля и бронхолегочной патологии.

Рекомендации:

  1. Подготовка емкости. Лучшим вариантом является использование контейнеров, продаваемых в аптеках. Если подобная емкость отсутствует, можно использовать поллитровую банку или небольшой пластиковый бак. Но важно принимать во внимание, что подобная тара очень неудобна и может применяться лишь в нетипичных обстоятельствах, если нет возможности использовать нормальный контейнер.
  2. За пару часов до сбора мокроты пациенту следует почистить зубы, прополоскать полость рта. Удаление слюны и частиц пищи позволяет повысить точность диагностического исследования.
  3. Получить врачебную консультацию. Специалист подробно расскажет, как правильно собирать бронхиальный секрет для исследования.

Если пациент сдает мокроту впервые, ему нередко необходимо несколько попыток, чтобы правильно выполнить процедуру.

Сдача биоматериала

Помимо нюансов, описанных выше, необходимо отметить, что собирать бронхиальную слизь рекомендовано утром. Основная причина такого рекомендации – с ночи в бронхах скапливается довольно много секрета, что значительно облегчает его отхаркивание. Собирать мокроту можно и в другое время суток, но необходимо учитывать, что качество и количество исследуемого биоматериала снизится.

При сборе мслизи следует придерживаться следующего алгоритма:

  1. Сделать глубокий вдох, задержать воздух на 10 секунд.
  2. Плавно выдохнуть.
  3. Сделать повторно 2 вдоха.
  4. На третьем выдохе следует выталкивать воздух из груди с силой и откашливаться.
  5. Поднести контейнер к губам, сплюнуть слизь.

Если придерживаться данного алгоритма, то можно собрать достаточное для исследования количество бронхиальной слизи. Если возникают трудности, можно лечь на бок, слегка наклониться вперед. Чтобы ускорить отхождение мокроты, можно дополнительно провести паровую ингаляцию или воспользоваться муколитическим препаратом.

Сбор бронхиального секрета указанным способом не исключает, что в исследуемый образец попадет слюна. Альтернатива этому – бронхоскопия. Во время процедуры врач использует эндоскоп, чтобы исследовать состояние реснитчатого эпителия и собрать требуемое количество слизи для проведения анализа.

Сбор мокроты в домашних условиях

Сбор материала для исследования можно проводить дома, придерживаясь указанного выше алгоритма. Важно плотно закрывать контейнер после того, как в него была помещена слизь. Кроме того, доставить образец в лабораторию следует в кратчайшие сроки. В противном случае информативность анализа может снизиться.

Специалисты отмечают, что примерно в половине случаев пациенты, собирая мокроту дома, нарушают установленные правила. В связи с этим возникает необходимость повторной сдачи анализов.

Расшифровка исследования, нормальные показатели

Что означает: «Лейкоциты в мокроте повышены», расскажет врач. Расшифровку анализа осуществляет фтизиатр или пульмонолог. Нормальными являются следующие показатели:

  1. Количество – 10-100 мл.
  2. Цвет – отсутствует.
  3. Запах – отсутствует.
  4. Слоистость – отсутствует.
  5. Кислотность – нейтральная, либо щелочная.
  6. Характер – слизистая.
  7. Примеси – отсутствуют.

После исследования слизи лаборант заполняет специальный бланк, в который вносит определенные показатели. Если проводится микроскопическое исследование, в специальные графы вносят количество содержащихся в слизи клеток. Иногда бывает много лейкоцитов в мокроте, а также эритроцитов, макрофагов.

Таким образом, исследование секрета, отделяемого во время кашля – эффективный диагностический метод, позволяющий выявить патологические изменения в дыхательной системе и вовремя назначить адекватную терапию.

Мы рассмотрели, что означают лейкоциты в мокроте в большом количестве.

Лейкоциты в моче - норма по возрасту, причины повышенных показателей лейкоцитов у ребенка, женщин, мужчин

Опубликовано: 06. 04.2021 16:30:00    Обновлено: 06.04.2021   Просмотров: 420630


Расшифровывать результаты анализов должен специалист, однако мало кто удерживается от того, чтобы самостоятельно не сравнить полученные значения с границами нормы. Результаты, отличающиеся от нормы, могут пугать и расстраивать. В этой статье мы расскажем, всегда ли лейкоциты в моче – это плохо, что означают повышенные и пониженные уровни лейкоцитов в моче, и когда стоит бить тревогу.

За что отвечают лейкоциты в моче

Лейкоциты – это клетки крови, белые кровяные тельца. Они обеспечивают иммунный ответ организма на внешние и внутренние неблагоприятные факторы. В норме лейкоциты циркулируют в кровяном русле. Уничтожая патогенную флору, они сами погибают и выводятся из организма с мочой. Поэтому высокий уровень лейкоцитов в моче – сигнал воспалительного процесса.

Показания к диагностике

Знать уровень лейкоцитов в моче необходимо в следующих ситуациях:

  • Диагностика воспалительных заболеваний в организме.
  • Диагностика воспалительных процессов мочевыводящих путей.
  • Профилактическое обследование.
  • Постановка на учет при беременности.
  • Перед госпитализацией или любым хирургическим вмешательством.
  • Оценка эффективности терапии.

Норма лейкоцитов в моче

Лейкоциты вырабатываются в костном мозге, откуда они попадают в кровь, где от недели до 20 дней защищают организм от вирусов и бактерий, а после погибают и удаляются, в том числе с мочой. В общем анализе мочи здорового мужчины микроскоп обнаружит не более 3 лейкоцитов. У женщин лейкоцитов может быть немного больше – до 6 штук. Большее количество – тревожный симптом. При пробе по Нечипоренко нормальный уровень лейкоцитов – не более 2000 клеток в 1 мл (у женщин допускается до 4000 клеток).

У детей референсные значения отличаются от «взрослых». Так, для грудничков нормальным показателем белых кровяных телец будет до 8 лейкоцитов в поле зрения микроскопа (для общего анализа мочи). Это количество может повышаться, когда у малыша режутся зубы.

У детей постарше нормальные значения приближаются к таковым у взрослых. Для расшифровки детских результатов существует специальная таблица, согласно которой нормальное количество лейкоцитов составляет:

  • до 28 дней жизни: 5-7 у мальчиков, 8-10 – у девочек;
  • до года: 5-6 у мальчиков, 8-9 – у девочек;
  • от года: 0-5 у мальчиков, 0-6 – у девочек.

В целом, чем ниже показатель лейкоцитов, тем лучше. Выше представлена общепризнанная схема интерпретации результатов уровня лейкоцитов в общем анализе мочи, однако некоторые врачи уверены, что любое повышение их уровня выше 3 у людей любого пола и возраста – повод для тщательного обследования.

Повышенные лейкоциты в моче

Повышенные лейкоциты – сигнал воспалительного процесса. Однако часто встречается ложная лейкоцитурия, связанная с неправильным сбором биоматериала. Для общего анализа требуется средняя порция утренней мочи. Перед ее сбором нужно тщательно вымыть внешние половые органы водой комнатной температуры, промокнуть кожу. Горячая вода, активное трение, мытье с мочалкой могут спровоцировать выброс лейкоцитов и привести к ложнозавышенному результату.

Есть и другие физиологические причины, которые могут повлиять на результаты анализа:

  • чрезмерные физические нагрузки;
  • частое посещение бани;
  • недостаточная гигиена;
  • употребление некоторых лекарственных препаратов (антибиотиков и противовоспалительных).

Если сбор биоматериала выполнен верно, и не было внешних факторов, влияющих на результаты, но уровень лейкоцитов выше нормы, значит, присутствует воспалительный процесс. Причем воспаляться могут любые отделы мочевыводящих путей: уретра, мочеточники, мочевой пузырь, почки. Воспаление часто бывает вызвано патогенными микроорганизмами, которые тоже будут определены при анализе. Если в моче обнаружены бактерии, нужно сделать посев с чувствительностью к антибиотикам, чтобы подобрать наиболее эффективное и безопасное лечение.

Некоторые из наиболее распространенных причин повышенных лейкоцитов в моче:

  1. Инфекция мочевыводящих путей - наиболее вероятная причина лейкоцитов в моче. При любой инфекции иммунная система увеличивает производство белых кровяных телец, чтобы бороться с бактериями. Более половины женщин и примерно каждый пятый мужчина за свою жизнь сталкиваются с ИМП. Симптомы инфекции мочевыводящих путей: боль или жжение при мочеиспускании, более частое мочеиспускание, боль в животе, спине или боку, мутная моча.
  2. Мочекаменная болезнь. Чаще всего мочекаменная болезнь развивается у людей в возрасте 20–45 лет, причем мужчины страдают от нее в 2,5-3 раза чаще, чем женщины. Когда камень движется по мочеточнику, он царапает окружающие ткани. В ответ на это повреждение больше лейкоцитов выбрасывается в кровь.
  3. Сахарный диабет. У людей с диабетом чаще возникает бессимптомная бактериурия.
  4. Поражение почечных клубочков (гломерулонефрит). При этих состояниях почки повреждены и не могут в полной мере выполнять свои функции.
  5. Системные заболевания. Воспалительные процессы, локализованные в других органах и системах.
  6. Венерические и гинекологические воспалительные заболевания.

Лейкоциты бывают разных групп: нейтрофилы, эозинофилы, базофилы, клетки системы мононуклеарных фагоцитов (моноциты, тканевые макрофаги, дендритные клетки) и лимфоциты. Каждый тип характерен для разных заболеваний. Для определения вида лейкоцитурии потребуется дополнительное исследование мочи.

Пониженные лейкоциты в моче

У здорового человека максимально низкая концентрация лейкоцитов в моче. Поэтому не существует такого понятия, как пониженные лейкоциты в моче. Низкий уровень лейкоцитов в моче – это и есть норма.

Совсем иначе обстоят дела с анализом крови. Пониженный уровень белых кровяных телец в крови может свидетельствовать о сниженной функции костного мозга, аутоиммунных нарушениях, врожденных патологиях, острых инфекционных процессах.

Подробнее читайте в статье про лейкоциты в крови.

Анализы на лейкоциты в моче

Для определения количества лейкоцитов в моче чаще всего применяют два анализа:

  1. Общий клинический анализ мочи (код: 85-85-001). Самый простой и распространенный, но от этого не менее информативный анализ мочи. Во время исследования определяют цвет, прозрачность и уровень кислотности мочи, а также количество следующих показателей: эритроцитов, лейкоцитов, белка, сахара, билирубина, гемоглобина, кетоновых тел, цилиндров и клеток эпителиальной ткани.
  2. Проба по Нечипоренко (подсчет форменных элементов, код: 85-85-009). Назначается по результатам общего анализа мочи, если были обнаружены отклонения в результатах анализа. Определяет количество эритроцитов, лейкоцитов, цилиндров и бактерий в биоматериале. Это дополнительный тест при диагностике воспалительных заболеваний мочевыводящих путей.

Посев всех образцов мокроты независимо от качества повышает ценность диагностики пневмококковой внебольничной пневмонии у пожилых людей Образцы низкокачественного качества (HQ) получены, но данные, касающиеся конкретно пневмококковой этиологии, отсутствуют. Мы изучили 323 рентгенологически подтвержденных случая ВП у пациентов в возрасте ≥ 65 лет. Образцы мокроты оценивали на качество микроскопически и культивировали. Два набора критериев качества применялись для разграничения HQ от низкокачественной (LQ) мокроты: соотношение лейкоцитов/эпителиальных клеток > 5 и ≤ 2,5 эпителиальных клеток/400-кратное увеличение (HQ1) или соотношение лейкоцитов/эпителиальных клеток > 1 (HQ2) . Образец мокроты был получен и качество оценено в 224 случаях; 47% были HQ1 и 76% HQ2. Инкапсулированные пневмококки (EPnc) культивировались в 25 (24%), 14 (12%), 35 (21%) и 4 (7%) образцах HQ1-, LQ1-, HQ2- и LQ2 соответственно.

Если другой тест на пневмококк (посев крови, антиген мочи или  двукратное увеличение антител к CbpA или PsaA) был положительным, EPnc культивировали в одинаковых пропорциях в HQ1- и LQ1-мокроте; если другой тест был отрицательным, EPnc реже культивировали в LQ1-, чем в HQ1-мокроте. ВПНК реже обнаруживали в LQ2-, чем в HQ2-мокроте. Наши результаты предполагают аналогичную специфичность культур LQ- и HQ-мокроты. Все образцы мокроты повышают ценность диагностики пневмококковой ВП у пожилых людей.

Введение

Значение посева мокроты в микробиологической диагностике внебольничной пневмонии (ВП) является спорным. Откашливаемая мокрота является наиболее доступным образцом, но выделения из верхних дыхательных путей, содержащие ротоглоточную флору, могут загрязнить образец в процессе сбора. Потенциальные возбудители ротоглоточной флоры могут давать ложноположительный результат в культуре мокроты, или бактерии ротоглоточной флоры могут перерастать патогены мокроты, что приводит к ложноотрицательному результату. Таким образом, посев отхаркиваемой мокроты обычно считался целесообразным только в том случае, если был получен образец надлежащего качества, указывающий на то, что образец взят из нижних дыхательных путей [1].

Степень контаминации образца мокроты ротоглоточной флорой оценивают путем микроскопического скрининга клеточного состава мазка, окрашенного по Граму. Обычно оценивают количество клеток плоского эпителия (СЭК) и полиморфноядерных клеток (ПЯЛ) [2]. Если обнаруживается небольшое количество SEC и большое количество PMN, образец считается репрезентативным для нижних дыхательных путей, то есть образцом высокого качества (HQ). Обычно используемое определение надлежащего качества мокроты составляет > 25 PMN и < 10 SEC на поле с малым увеличением [3,4,5]. Однако существуют различия в используемых критериях и других соотношениях PMN или лейкоцитов к SEC, таких как ≥ 20 [6], ≥ 10 [7], > 5 [8], ≥ 2 [9].] и > 1 [10, 11]. При простом скрининге оцениваются только SEC, и образцы с меньшим количеством SEC на поле, например 10 SEC [2, 12, 13] или 25 SEC [3], считаются адекватными. Несмотря на то, что существуют различия в критериях, используемых для HQ, образцы мокроты, не соответствующие применяемым критериям, часто отбрасываются из дальнейшего анализа, что может существенно уменьшить количество и сместить выбор образцов для культурального анализа [4, 5, 14, 15].

Насколько нам известно, нет исследований, оценивающих роль качества мокроты в отношении пневмококковой этиологии, особенно в микробиологической диагностике ВП у взрослых. В настоящем исследовании среди пожилых пациентов с ВП мы оценили актуальность оценки качества мокроты для посева мокроты в диагностике пневмококковой ВП.

Методы

Исследуемая популяция

Мы исследовали пациентов в возрасте ≥ 65 лет, не находящихся в стационаре, с радиологически подтвержденной ВП, участвовавших в финском эпидемиологическом исследовании ВП в 2005–2007 гг. [16, 17]. Всего было подтверждено 323 случая ВП. Мы собрали мокроту, мазок из носоглотки, кровь для посевов крови (аэробных и анаэробных) и серологических исследований (образец венозной крови с образцом выздоравливающего через 4–8 недель), а также образцы мочи.

Микробиологическая оценка

Обработка всех образцов и используемые методы подробно описаны ранее [16]. Что касается образцов мокроты, то спонтанно полученный или индуцированный образец мокроты с использованием распылителя NaCl был получен и обработан, как подробно описано ниже, сразу после сбора или помещен в температуру от + 4  до + 8 °C до обработки. Гнойную часть образца мокроты распределили на предметном стекле микроскопа и высушили на воздухе, большую часть других гнойных частей гомогенизировали с дитиотреитом (Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури), а остальную часть сохранили для анализа на вирусы. . Часть гомогенизированного образца мокроты распределяли на предметном стекле, как указано выше, а другую часть высевали неразбавленным и в разведении 1/100 в 0,9% NaCl на чашках с шоколадом, кровью и гентамицином и кровяным агаром и инкубировали при 37 °C с 5% CO 2 в течение ночи. Предметные стекла и инкубированные планшеты были отправлены в бактериологическую лабораторию для дальнейшего анализа. Предметные стекла окрашивали по Граму, а качество мокроты оценивали путем микроскопии предметного стекла, содержащего гомогенизированный образец мокроты, с использованием объектива 40×, исследуя 10 полей и вычисляя среднее количество клеток на них. Первым критерием для образца мокроты HQ были ≤ 2,5 СЕК на поле при увеличении 400× (или ≤ 10 СЕК на 100× поле) и соотношение лейкоциты/эпителиальные клетки > 5 (HQ1) [8, 12]. Мы также применяли другой, менее строгий критерий для образца мокроты HQ (HQ2), согласно которому качество мокроты оценивалось как высокое, если соотношение лейкоциты/эпителиальные клетки составляло > 1 [10, 11, 16]. Мокроту, не отвечающую критериям HQ1 и HQ2, расценивали как низкокачественную (LQ1 и LQ2 соответственно). На предметном стекле с негомогенизированной мокротой оценивали преобладающую бактериальную морфологию. Все образцы мокроты исследовали культуральным методом независимо от результата оценки качества. Пневмококки идентифицировали из культуральных чашек с использованием традиционных методов идентификации: альфа-гемолиз, морфология колоний и чувствительность оптохина (Diatabs, 10 мкг, Rosco Diagnostica A/S, Таструп, Дания). В случае промежуточного или неопределенного результата оптохина применяли тест на растворимость в желчи. Предел обнаружения для посева мокроты составил 2 × 10 4 КОЕ/мл негомогенизированной мокроты. Для серотипирования изоляты пересевают на чашки с кровяным агаром и серотипируют с помощью контриммуноэлектрофореза, латексной агглютинации (нейтральные серогруппы/типы 7 и 14) и реакции Келлунга, если необходимо, с использованием поливалентной омнисыворотки, пула, типа, группы и факторной сыворотки (Statens Serum Institut , Копенгаген, Дания) [18]. Изоляты с положительной реакцией при серотипировании считались инкапсулированными пневмококками.

Анализ данных

Точный критерий Фишера использовался для сравнения категориальных переменных и критерий Манна-Уитни U для непрерывных переменных. Значение p < 0,05 считалось статистически значимым. Статистический анализ был выполнен с использованием IBM SPSS Statistics для Windows, версия 25.0 (IBM Corp. , Армонк, Нью-Йорк).

Шкала CURB-65 (спутанность сознания, мочевина > 7 ммоль/л, частота дыхания ≥ 30/мин, низкое артериальное давление [систолическое < 90 мм рт.ст. или диастолическое ≤ 60 мм рт.ст.], возраст ≥ 65 лет), мера тяжести пневмонии рассчитывали, как описано Lim et al. [19].

Результаты

Образец мокроты был получен в 226 (70%), а качество образца оценивалось в 224 (69%) из 323 случаев ВП. В одном случае предметное стекло было разбито, и качество мокроты оценить не удалось, а в другом случае на предметном стекле отсутствовал образец. Фоновые характеристики и прогностические факторы всех 323 подтвержденных случаев ВП описаны ранее [16]. Средний возраст 224 изученных здесь случаев составлял 78 лет (диапазон 65–97 лет), 54 % были мужчинами, 13 % были нынешними курильщиками, 82 % были госпитализированы, а 4 % умерли в течение 30 дней. Из 224 образцов мокроты 106 (47%) были HQ1 и 170 (76%) HQ2 (таблица 1). Распределение среднего количества лейкоцитов и клеток плоского эпителия на поле в образцах мокроты представлено в онлайн-ресурсе 1. Среди всех 323 случаев ВП образец HQ1 был получен в 33% случаев, а образец HQ2 - в 53% случаев. случаи.

Таблица 1 Высококачественные образцы мокроты, собранные у пациентов с внебольничной пневмонией

Полная таблица

Инкапсулированные пневмококки были культивированы из 40 (18%) из 226 образцов мокроты и из 25 (24%) и 14 (12 %) из 106 образцов мокроты HQ1 и 118 образцов LQ1 (точный критерий Фишера на различие пропорций, p  = 0,02) соответственно и 35 (21%) и 4 (7%) из 170 образцов мокроты HQ2 и 54 образцов LQ2 ( p  = 0,03) соответственно (табл. 2). Инкапсулированные пневмококки культивировали в одинаковых пропорциях в мокроте HQ1 и LQ1, если другой пневмококковый тест (посев крови, анализ мочи на антиген, двукратное увеличение антител к поверхностному адгезину А пневмококка или холин-связывающему белку А, инкапсулированный пневмококк в культуре мазка из носоглотки) был положительным ( Таблица 2). Если другой пневмококковый тест был отрицательным для пневмококка, инкапсулированные пневмококки выделялись чаще из мокроты HQ1, чем из мокроты LQ1. Инкапсулированные пневмококки реже выделялись из мокроты LQ2, чем из мокроты HQ2, независимо от результатов других пневмококковых диагностических тестов.

Таблица 2 Эффективность посева мокроты на инкапсулированный пневмококк в сравнении с другими диагностическими тестами на пневмококк при использовании образцов мокроты высокого и низкого качества и любого качества

Таблица полного размера самопроизвольное производство; в 3 случаях не было зафиксировано, было ли индуцировано выделение мокроты или нет. Мокрота оценивалась как HQ1 и как HQ2 в одинаковых пропорциях, независимо от того, были ли образцы индуцированы или получены спонтанно (таблица 1). Среди 32 образцов индуцированной мокроты инкапсулированные пневмококки были выделены из 5 (31%) и 2 (13%, p  = 0,39) образцов HQ1 и LQ1 соответственно и из 6 (26%) и 1 (11%, p  = 0,64) образцов HQ2 и LQ2 соответственно. Среди 189 спонтанных мокрот инкапсулированные пневмококки были обнаружены в 19 (22%) и 12 (12%, p  = 0,08) образцах HQ1 и LQ1 соответственно, а также в 28 (19%) и 3 (7%, p  = 0,06) образцов HQ2 и LQ2 соответственно.

В 218 случаях ВП были доступны записи об использовании противомикробных препаратов во время неотложного визита и в течение 2 недель до визита. Аналогичные пропорции мокроты HQ1 и HQ2 были получены независимо от того, подвергались ли пациенты воздействию противомикробных препаратов до или во время визита или нет (таблица 1). Среди 137 случаев без применения антибиотиков инкапсулированные пневмококки были выделены в 20 (31%) образцах HQ1 и в 10 (14%, p  = 0,02) образцов LQ1, 26 (25%) образцов HQ2 и 4 (12%, p  = 0,15) образцов LQ2. Было 28 случаев применения антибиотиков в течение 2 недель до визита, которые все еще получали курс антибиотиков на момент включения в исследование; инкапсулированные пневмококки не культивировались ни в одном из образцов мокроты этих случаев, независимо от качества мокроты.

Из 323 случаев ВП у 217 тяжесть пневмонии оценивалась с использованием шкалы CURB-65 и образца мокроты с доступной оценкой качества. Показатель CURB-65 был ≥ 1 во всех случаях, так как все пациенты, включенные в настоящее исследование, были в возрасте 65 лет и старше. Доля случаев с мокротой HQ1 была ниже среди лиц с оценкой CURB-65 от 3 до 5 (35%), чем среди лиц с оценкой CURB-65 от 1 до 2 (52%, 9).0033 p  = 0,05, табл. 1). Используя менее строгий критерий HQ2 для мокроты HQ, доли мокроты HQ среди случаев с оценкой CURB-65 от 3 до 5 и с оценкой CURB-65 от 1 до 2 были одинаковыми (таблица 1).

Медиана возраста среди пациентов с образцом мокроты HQ1 (77 лет, диапазон 65–96 лет) была ниже, чем среди пациентов с образцом мокроты LQ1 (80 лет, 65–97 лет; Mann–Whitney U тест, p  = 0,02). Средний возраст среди пациентов с образцом мокроты HQ2 (78 лет, 65–9 лет).7 лет) и среди лиц с мокротой LQ2 (80 лет, 65–97 лет, p  = 0,19) было аналогичным.

Обсуждение

Это первое исследование, посвященное специальной оценке качества мокроты при микробиологической диагностике пневмококковой ВП у пожилых людей. Положительные культуры для инкапсулированных пневмококков из образцов мокроты HQ и LQ с использованием строгого критерия показали аналогичную согласованность с другими диагностическими тестами на пневмококки, если другие тесты были положительными. Когда другие пневмококковые тесты были отрицательными, образцы мокроты LQ чаще были отрицательными, чем образцы HQ, что предполагает более низкую чувствительность, а не более низкую специфичность. Кроме того, отбор, основанный на качестве мокроты, привел к значительной потере случаев и смещению выборок в сторону более молодых и менее тяжелых случаев.

Низкая частота ложноположительных результатов в образцах LQ мокроты, наблюдаемая в этом исследовании, может быть связана с низкой частотой носительства пневмококков в исследуемой популяции: если носительство инкапсулированных пневмококков встречается редко, контаминация культуры мокроты инкапсулированными пневмококками также маловероятна. В нашем предыдущем исследовании среди здоровых пожилых людей (средний возраст 70 лет, диапазон 65–92 года) распространенность назофарингеального носительства инкапсулированного пневмококка составила 1,5% [20]. В других исследованиях среди пожилых людей сообщалось о распространенности носоглоточного носительства ~ 5% при использовании обычных методов посева [21, 22]. Установлено, что носительство чаще встречается при заборе проб из носоглотки и ротоглотки (8%) и при использовании молекулярных методов (22%) [22].

Критерии, обычно используемые для идентификации образцов мокроты HQ, основаны на исследовании, опубликованном в 1975 году Мюрреем и Вашингтоном, которые показали, что в образцах мокроты с < 10 SEC на поле при 100-кратном увеличении растет такое же количество различных видов бактерий, как и в случайных образцах. транстрахеальные аспирационные образцы [12]. Данные Мюррея и Вашингтона были позже повторно проанализированы после удаления некоторых видов, которые вряд ли вызывают пневмонию у взрослых, и был сделан вывод, что образцы мокроты с > 25 лейкоцитами на поле, независимо от количества СПК, аналогичны транстрахеальным аспиратам [23]. Геклер и др. [3], изучавшие парные образцы мокроты и транстрахеального аспирата, обнаружили, что 9В 4% мокроты с < 10 SEC и > 25 лейкоцитов и в 93% мокроты с < 25 SEC, содержащей потенциальный патоген, был культивирован тот же микроорганизм из соответствующего транстрахеального аспирата. Тем не менее, они также отметили, что если в образце мокроты с < 10 SEC и > 25 лейкоцитов не растет патоген, все равно существует 45% вероятность того, что парный транстрахеальный аспират будет положительным для патогена [3]. Исследования Мюррея и Вашингтона, Ван Скоя и Геклера и др. [3, 12, 23] включали и другие бактерии, помимо пневмококка, такие как кишечные грамотрицательные палочки. Предыдущие исследования чаще обнаруживали кишечные грамотрицательные палочки в образцах, взятых после начала антимикробной терапии [4, 8, 14, 24], и было высказано предположение, что они могут представлять собой ротоглотку, которая могла быть колонизирована во время лечения антибиотиками [8]. ]. Таким образом, критерии, полученные в этих исследованиях, предназначены не специально для выявления пневмококковой ВП, а для выявления бактериальной этиологии ВП в целом. Фактически, в исследовании Мюррея и Вашингтона пневмококки не были обнаружены в образцах мокроты, содержащих > 25 SEC и ≤ 25 лейкоцитов на поле [12]. В недавнем исследовании среди детей распространенность пневмококка и других потенциальных патогенов сравнивали с количеством СЭК и ПЯЛ в индуцированных образцах мокроты [13]. Было обнаружено, что распространенность пневмококка снижалась с увеличением числа СПК, но оставалась неизменной с увеличением числа ПЯН [13].

В настоящем исследовании не было обнаружено измеримой разницы в доле образцов HQ среди индуцированных и спонтанно полученных образцов мокроты. Это похоже на результаты предыдущего исследования, в котором применялось несколько иное соотношение PMN и SEC для HQ мокроты, но было обнаружено, что индукция мокроты не улучшала качество образцов [9]. Кроме того, антимикробное лечение не влияло на качество мокроты независимо от того, какой из критериев HQ использовался. Это согласуется с результатами García-Vásquez et al. [4]. Используя ту же группу пациентов с ВП, что и в настоящем исследовании, мы ранее изучали влияние антимикробной терапии на посев мокроты на пневмококк и обнаружили, что лечение антибиотиками, назначаемое до острого визита пациента и продолжающееся во время визита, значительно снижает выявление пневмококка. инкапсулированные пневмококки культурой в образцах мокроты HQ2 (в этом исследовании для высококачественной мокроты применялся только критерий HQ2) [25]. В мокроте LQ2 инкапсулированные пневмококки не были обнаружены ни в одном случае при антимикробном лечении [25]. В настоящем исследовании, независимо от качества мокроты, инкапсулированные пневмококки не были обнаружены среди пациентов с предшествующим антимикробным лечением, которое все еще продолжалось во время экстренного визита.

При использовании более строгого критерия HQ1 образцы мокроты HQ реже получали среди случаев, классифицированных как более тяжелые по шкале CURB-65, чем среди случаев с низкой степенью тяжести. Этого не наблюдалось при применении менее жесткого критерия HQ2. Пациенты с образцом мокроты HQ1 были немного моложе пациентов с образцом мокроты LQ1, но не было существенной разницы в возрасте пациентов с образцом мокроты HQ2 и LQ2. В предыдущем исследовании среди взрослых пациентов с использованием > 25 PMN и < 10 SEC на поле в качестве критерия HQ не наблюдалось разницы в доле пациентов с адекватным выделением мокроты между пациентами с оценкой CURB-65 от 1 до 2 и от 3 до 5 [5]. Также никакой связи между тяжестью ВП и качеством полученного образца мокроты не наблюдалось в предыдущих исследованиях, в которых для оценки тяжести заболевания использовались индекс тяжести пневмонии и шкала результатов исследования пациентов [4, 5]. Однако среди пациентов пожилого возраста сообщалось о низких показателях получения образцов мокроты, соответствующих установленным критериям качества [14, 15]. Рикельме и др. изучили 101 пациента с ВП в возрасте 65 лет и старше и получили образец мокроты от 47 пациентов, но только 18 (38%) образцов были признаны достоверными на основании их критериев качества (≥ 25 PMN и < 10 SEC на поле) [15]. Таким образом, только у 18% всех пациентов с ВП был получен достоверный образец мокроты [15]. В недавнем исследовании, оценивающем частоту микробиологического тестирования взрослых, госпитализированных с ВП на шести континентах, посев мокроты был выполнен у 62% всех пациентов, но методы тестирования значительно различались географически [26]. Сообщается, что в Северной и Южной Америке и Океании посев мокроты проводят реже, а в Азии и Европе — чаще, чем в остальном мире [26]. В настоящем исследовании достоверный образец мокроты в соответствии со строгим критерием HQ1 можно было получить в 33% всех случаев ВП, но в 53% случаев, когда использовался критерий HQ2 для мокроты HQ, и в 70% случаев, когда критерии качества не использовались. Когда образцы отклоняются от дальнейших анализов на основании заранее определенных критериев, применяемые критерии должны быть тщательно оценены в отношении соответствующего изучаемого патогена (патогенов), поскольку отказ от дальнейшего анализа не только уменьшает количество анализируемых образцов, но и может привести к систематической ошибке при отборе. проанализированных случаев.

В отделении неотложной помощи антимикробное лечение начинают эмпирически, когда есть вероятность диагноза ВП. В настоящем исследовании образцы были собраны только для исследовательских целей и не использовались для клинического лечения пациентов. Таким образом, мы не смогли оценить преимущества сбора мокроты в отношении результатов лечения пациентов.

В заключение, строгие критерии для HQ мокроты значительно сокращают количество доступных образцов мокроты и смещают выбор случаев для микробиологического анализа. Тем не менее, наши результаты показывают, что специфичность культуры LQ мокроты для инкапсулированного пневмококка аналогична культуре HQ мокроты, а это означает, что добавление результатов культуры LQ мокроты не ставит под угрозу частоту ложноположительных результатов при диагностике пневмококковой ВП у пожилых людей. Таким образом, ограничение образцов мокроты на основе произвольно строгих критериев качества не поддерживается, и все образцы следует оценивать на наличие пневмококковой этиологии.

Ссылки

  1. Манделл Л.А., Вундеринк Р.Г., Анзуэто А. и др. (2007) Американское общество инфекционных заболеваний/Американское торакальное общество, согласованные рекомендации по лечению внебольничной пневмонии у взрослых. Clin Infect Dis 44 (Suppl 2): ​​S27–S72

    Статья КАС пабмед Google ученый

  2. Thomson RB Jr (2007) Сбор, транспортировка и обработка образцов: бактериология. В: Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Landry ML, Pfaller MA (eds) Manual of Clinical Microbiology, 9е изд. ASM Press, Вашингтон, округ Колумбия, стр. 291–333

    . Google ученый

  3. Geckler RW, Gremillion DH, McAllister CK, Ellenbogen C (1977) Микроскопическое и бактериологическое сравнение парных мокрот и транстрахеальных аспиратов. J Clin Microbiol 6:396–399

    CAS пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  4. García-Vázquez E, Marcos MA, Mensa J et al (2004) Оценка полезности посева мокроты для диагностики внебольничной пневмонии с использованием системы прогнозирующей оценки PORT. Arch Intern Med 164: 1807–1811

    Артикул пабмед Google ученый

  5. van der Eerden MM, Vlaspolder F, de Graaff CS, Groot T, Jansen HM, Boersma WG (2005) Значение интенсивного диагностического микробиологического исследования у пациентов с внебольничной пневмонией низкого и высокого риска. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 24:241–249

    Статья пабмед Google ученый

  6. Heineman HS, Chawla JK, Lopton WM (1977) Дезинформация из посева мокроты без микроскопического исследования. J Clin Microbiol 6:518–527

    CAS пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  7. Musher DM, Montoya R, Wanahita A (2004) Диагностическая ценность микроскопического исследования окрашенной по Граму мокроты и культур мокроты у пациентов с бактериемической пневмококковой пневмонией. Clin Infect Dis 39:165–169

    Статья пабмед Google ученый

  8. Калин М., Линдберг А.А., Туневалл Г. (1983)Этиологическая диагностика бактериальной пневмонии с помощью окрашивания по Граму и количественного посева мокроты. Лейкоциты или альвеолярные макрофаги как индикаторы репрезентативности образца. Scand J Infect Dis 15:153–160

    Статья КАС пабмед Google ученый

  9. Chuard C, Fracheboud D, Regamey C (2001) Влияние индукции мокроты гипертоническим раствором на качество образцов. Диагностика Microbiol Infect Dis 39:211–214

    Артикул КАС пабмед Google ученый

  10. Yang S, Lin S, Khalil A et al (2005)Количественный анализ ПЦР с использованием образцов мокроты для экспресс-диагностики пневмококковой пневмонии у взрослых пациентов отделений неотложной помощи. J Clin Microbiol 43:3221–3226

    Статья КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  11. Lagerstrom F, Fredlund H, Holmberg H (2004) Образцы мокроты можно получить у пациентов с внебольничной пневмонией в учреждениях первичной медико-санитарной помощи. Scand J Prim Health Care 22: 83–86

    Артикул пабмед Google ученый

  12. Murray PR, Washington JA (1975) Микроскопический и бактериологический анализ отхаркиваемой мокроты. Mayo Clin Proc 50:339–344

    CAS пабмед Google ученый

  13. Murdoch DR, Morpeth SC, Hammitt LL et al (2017) Микроскопический анализ и оценка качества индуцированной мокроты у детей с пневмонией в исследовании PERCH. Клин Инфекция Дис 64: S271–S279

    Артикул КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  14. Ewig S, Schlochtermeier M, Goke N, Niederman MS (2002) Применение мокроты в качестве диагностического инструмента при пневмонии: ограниченный результат, минимальное влияние на решения о лечении. Сундук 121:1486–1492

    Артикул пабмед Google ученый

  15. Riquelme R, Torres A, El-Ebiary M et al (1996)Внебольничная пневмония у пожилых людей: многофакторный анализ факторов риска и прогностических факторов. Am J Respir Crit Care Med 154:1450–1455

    Артикул КАС пабмед Google ученый

  16. Palmu AA, Saukkoriipi A, Snellman M et al (2014) Заболеваемость и этиология внебольничной пневмонии у пожилых людей в проспективном популяционном исследовании. Scand J Infect Dis 46:250–259

    Статья пабмед Google ученый

  17. Jokinen J, Snellman M, Palmu AA et al (2018) Тестирование вакцин против пневмонии у пожилых людей: определение случая пневмококковой пневмонии в отсутствие золотого стандарта. Ам Дж Эпидемиол 187:1295–1302

    Артикул пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  18. Kilpi T, Herva E, Kaijalainen T, Syrjanen R, Takala AK (2001) Бактериология острого среднего отита в группе финских детей, наблюдаемых в течение первых двух лет жизни. Pediatr Infect Dis J 20:654–662

    Статья КАС пабмед Google ученый

  19. Lim WS, van der Eerden MM, Laing R et al (2003) Определение тяжести внебольничной пневмонии при поступлении в больницу: международное исследование деривации и проверки. Торакс 58: 377–382

    Артикул КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  20. Palmu AA, Kaijalainen T, Saukkoriipi A, Leinonen M, Kilpi TM (2012)Носоглоточное носительство Streptococcus pneumoniae и тест на антиген пневмококка в моче у здоровых пожилых людей. Scand J Infect Dis 44:433–438

  21. Flamaing J, Peetermans WE, Vandeven J, Verhaegen J (2010) Пневмококковая колонизация у пожилых людей в условиях отсутствия вспышки. J Am Geriatr Soc 58:396–398

    Артикул пабмед Google ученый

  22. ван Деурсен А.М., ван ден Берг М.Р., Сандерс Э.А., Экспериментальная исследовательская группа по перевозке (2016 г.) Носительство Streptococcus pneumoniae у бессимптомных, проживающих по месту жительства пожилых людей в Нидерландах. Vaccine 34:4–6

  23. Van Scoy RE (1977) Бактериальные культуры мокроты. Точка зрения клинициста. Mayo Clin Proc 52:39–41

    PubMed Google ученый

  24. Spencer RC, Philp JR (1973) Влияние предшествующей антимикробной терапии на бактериологические данные у пациентов с первичной пневмонией. Ланцет 2:349–350

    Артикул КАС пабмед Google ученый

  25. Сауккориипи А., Палму А.А., Йокинен Дж., Верлант В., Хаусдорф В.П., Килпи Т.М. (2015)Влияние противомикробного применения на пневмококковые диагностические тесты у пожилых пациентов с внебольничной пневмонией. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 34:697–704

    Артикул КАС пабмед Google ученый

  26. Carugati M, Aliberti S, Reyes LF et al (2018) Микробиологическое тестирование взрослых, госпитализированных с внебольничной пневмонией: международное исследование. ERJ Open Res 4: 00096–02018. https://doi.org/10.1183/23120541.00096-2018

    Артикул пабмед ПабМед Центральный Google ученый

Скачать ссылки

Благодарности

Мы искренне благодарим всех пожилых участников за согласие на участие в исследовании во время острого заболевания. Это исследование было проведено в сотрудничестве с GlaxoSmithKline Biologicals SA. Данные рукописи были представлены на 11-м Международном симпозиуме по пневмококкам и пневмококковым заболеваниям, Мельбурн, Австралия, 15-19 апреля 2018 г. Эта работа была поддержана GlaxoSmithKline Biologicals SA.

Информация об авторе

Авторы и организации

  1. Департамент решений в области общественного здравоохранения, Национальный институт здравоохранения и социального обеспечения, Оулу, Финляндия

    Annika Saukkoriipi

  2. Департамент решений в области общественного здравоохранения, Национальный институт здравоохранения и социального обеспечения Тампере, Финляндия

    Arto A. Palmu

  3. Департамент решений в области общественного здравоохранения, Национальный институт здравоохранения и социального обеспечения, Хельсинки, Финляндия

    Юкка Йокинен

Авторы

  1. Annika Saukkoriipi

    Посмотреть публикации автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

  2. Arto A. Palmu

    Просмотр публикаций автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

  3. Юкка Йокинен

    Просмотр публикаций автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Академия

Автор, ответственный за переписку

Анника Сауккорипи.

Декларация этики

Конфликт интересов

AS, AAP и JJ являются сотрудниками Национального института здравоохранения и социального обеспечения, который получил финансирование исследований от группы компаний GSK и Pfizer, Inc.

Этическое одобрение

Протокол исследования был одобрен советом по этике Больничного округа Пирканмаа, Городским центром здоровья Тампере и институциональным советом Национального института здравоохранения и социального обеспечения (THL).

Информированное согласие

Информированное согласие было получено от всех отдельных участников или их ближайших родственников/опекунов.

Дополнительная информация

Примечание издателя

Springer Nature остается нейтральной в отношении юрисдикционных претензий в опубликованных картах и ​​институциональной принадлежности.

Дополнительные электронные материалы

ESM 1

(PDF 340 kb)

Права и разрешения

Открытый доступ Эта статья распространяется в соответствии с условиями международной лицензии Creative Commons Attribution 4. 0 (http://creativecommons.org. /licenses/by/4.0/), что разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии, что вы укажете автора(ов) и источник, предоставите ссылку на лицензию Creative Commons и укажете, были внесены изменения.

Перепечатки и разрешения

Об этой статье

Окраска мокроты по Граму: цель, процедура и результаты

Что такое окраска мокроты по Граму?

Окраска мокроты по Граму — это лабораторный тест, позволяющий врачу диагностировать бактериальную инфекцию дыхательных путей. Они могут заказать его, если у вас есть симптомы респираторной инфекции, которая может быть вызвана бактериями. Это наиболее распространенный предварительный тест, помимо рентгенографии грудной клетки, на пневмонию и другие респираторные инфекции, который может помочь вашему врачу быстро назначить план лечения.

Тест иногда называют окрашиванием мокроты по Граму. Он назван в честь своего изобретателя Ганса Христиана Грама.

Ваш врач может назначить окраску мокроты по Граму, чтобы определить причину пневмонии. Это инфекция, которая может поразить ваши нижние дыхательные пути. Это часто вызывается микроорганизмами, такими как бактерии, вирусы или грибки.

Симптомы пневмонии могут варьироваться от умеренных до опасных для жизни и включают:

  • свистящее дыхание
  • одышку
  • rapid breathing
  • chest pain
  • cough
  • fever
  • chills
  • fatigue
  • headache
  • muscle aches
  • nausea and vomiting
  • sputum that's colored or has an odor
  • confusion
  • respiratory failure
  • шок (сильно низкое артериальное давление)

Дети в возрасте до 5 лет, пожилые люди старше 65 лет и люди со слабой иммунной системой подвергаются повышенному риску развития пневмонии.

Чтобы завершить окрашивание мокроты по Граму, ваш врач должен взять образец вашей мокроты и отправить его в лабораторию для анализа.

Мокрота представляет собой смесь слюны и слизи, которую вы отхаркиваете из дыхательных путей. Обычно он окрашен и имеет густую консистенцию, особенно если у вас есть инфекция в легких.

Обычная слюна изо рта, обычно прозрачная.

Ваш врач может попросить вас собрать образец собственной мокроты, но если вы не можете, он может взять его с помощью бронхоскопии.

Самостоятельный сбор

Если вы очень больны, вы можете находиться в больнице, когда ваш врач назначает окраску мокроты по Граму. Медсестра поможет вам откашлять мокроту. Если у вас есть проблемы, вам могут назначить респираторную терапию, чтобы разжижить мокроту в дыхательных путях.

Если вы находитесь дома, врач может попросить вас самостоятельно собрать образец мокроты. Вам дадут стерильную чашку для проб. Подождите, пока вы будете готовы собрать образец, прежде чем открывать крышку.

Накануне сдачи пробы попробуйте выпить много жидкости, например воды или чая. Это поможет вашему телу производить больше мокроты. Соберите образец первым делом утром, перед едой или питьем. В это время, как правило, присутствует больше бактерий, что может помочь обеспечить точные результаты теста.

Чтобы сдать образец мокроты:

  • Почистите зубы и прополощите рот. Не используйте антисептические жидкости для полоскания рта.
  • Сделайте пару долгих глубоких вдохов. Затем глубоко вдохните и сильно покашляйте, пока не выйдет мокрота.
  • Выплюньте мокроту в чашку для проб. Продолжайте откашливать мокроту, пока чашка не наполнится до отметки, которая должна равняться примерно 1 чайной ложке.
  • Завинтите крышку на чашку, промойте и высушите ее снаружи. Напишите свое имя и дату на этикетке.
  • Отнесите образец в клинику или лабораторию, следуя указаниям врача. При необходимости вы можете хранить его в холодильнике до 24 часов, но не следует замораживать или хранить при комнатной температуре.

Если вы не можете откашлять достаточное количество мокроты, попробуйте вдохнуть пар из кипящей воды или примите горячий паровой душ. Образец мокроты должен быть взят из глубины легких, чтобы тест был точным.

Если вы по-прежнему не можете откашлять достаточное количество мокроты, врач, скорее всего, проведет бронхоскопию, чтобы собрать мокроту непосредственно из легких.

Бронхоскопия

Бронхоскопия — это простая процедура, которая обычно занимает от 30 до 60 минут. Вы, вероятно, будете бодрствовать из-за этого.

Спросите у своего врача, следует ли вам что-либо предпринять для подготовки к бронхоскопии. Они могут попросить вас не принимать лекарства, повышающие риск кровотечения, такие как аспирин и варфарин, за день до процедуры. Ваш врач может также попросить вас воздержаться от еды и питья в ночь перед процедурой.

Для проведения бронхоскопии врач или медсестра впрыскивают вам в нос и горло местный анестетик. Они также могут дать вам успокоительное, чтобы помочь вам расслабиться, или лекарство, чтобы вы заснули, но общая анестезия не требуется.

Ваш врач введет бронхоскоп через нос или рот в ваши легкие. Это мягкая узкая трубка со светом и увеличительным стеклом на конце.

Ваш врач осмотрит ваши легкие с помощью эндоскопа и возьмет образец вашей мокроты, чтобы отправить его в лабораторию для анализа.

За вами будут следить, пока вы полностью не проснетесь. Чтобы быть в безопасности, вы должны попросить кого-нибудь отвезти вас домой после этого.

В лаборатории техник проанализирует образец мокроты с помощью окраски мокроты по Граму.

Они поместят тонкий слой вашей мокроты на предметное стекло и дадут ему высохнуть. Затем предметное стекло обработают специальным красителем, чувствительным к пептидогликану.

Пептидогликан представляет собой полимер, состоящий из аминокислот и сахаров. Он содержится в клеточных стенках бактерий и помогает персоналу лаборатории узнать, присутствуют ли бактерии в вашей мокроте.

После добавления красителя лаборант исследует предметное стекло под микроскопом. Окрашивание по Граму не позволяет им идентифицировать каждый конкретный тип бактерий, но может помочь им определить, есть ли бактерии с толстыми клеточными стенками или с тонкими клеточными стенками.

Бактерии с толстыми клеточными стенками дают грамположительный результат. Бактерии с тонкими клеточными стенками дают грамотрицательный результат.

Тест также может помочь лаборанту определить наличие грибков в мокроте.

Лаборант также будет искать лейкоциты в вашей мокроте, что является признаком инфекции.

Если результаты анализа окрашивания мокроты по Граму не соответствуют норме, это означает, что были обнаружены бактерии и лейкоциты. Обнаруженные бактерии будут грамположительными или грамотрицательными.

Common Gram-positive bacteria detected by the test include:

  • Staphylococcus
  • Streptococcus
  • Bacillus
  • Listeria
  • Enterococcus
  • Clostridium

Common Gram- к отрицательным бактериям, обнаруженным тестом, относятся:

  • E. coli
  • виды Klebsiella
  • виды Proteus
  • Pseudomonas aeruginosa

Нормальный результат теста означает, что в образце мокроты обнаружено мало лейкоцитов и не обнаружено бактерий, и ваши симптомы могут быть вызваны другими причинами.

В зависимости от результатов анализов ваш врач может назначить план лечения или назначить дополнительные анализы. Если у вас бактериальная инфекция легких, скорее всего, вам назначат антибиотики.

Этого, вероятно, будет достаточно для лечения инфекции, если у вас здоровая иммунная система.

В некоторых случаях бактериальная пневмония может быть более тяжелой и даже опасной для жизни. Это может быть особенно серьезно для пожилых людей и людей с ослабленной иммунной системой. Иногда тяжелые случаи пневмонии могут привести к:

  • скоплению жидкости в легких
  • образованию рубцов в легких, которые могут сделать вас восприимчивыми к инфекциям в будущем
  • абсцессам в легких
  • дыхательной недостаточности бактериальная инфекция крови

Ранняя диагностика может помочь вашему врачу назначить план лечения, который может помочь улучшить ваши перспективы.

Со сбором образца мокроты связано очень мало рисков. Вы можете почувствовать легкое головокружение при глубоком кашле или дискомфорт в легких или горле.


Learn more

 

2011-2017 © МБУЗ ГКП №  7, г.Челябинск.